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¿Qué es heterodúplex?

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No entiendo qué es exactamente heterodúplex debido a la falta de disponibilidad de un diagrama adecuado. Según wikipidea:

Un heterodúplex es una molécula bicatenaria (dúplex) de ácido nucleico originada a través de la recombinación genética de cadenas simples complementarias derivadas de diferentes fuentes, como de diferentes cromosomas homólogos o incluso de diferentes organismos.

¿Debería llamarse heterodúplex a la siguiente estructura resaltada?


Lo que ha encerrado en un círculo no es un heterodúplex. Un mejor nombre para él sería "cruce" o "unión". En cambio, los dos dúplex en la parte inferior de su diagrama son los que deberían etiquetarse como heterodúplex. Su diagrama muestra un proceso mediante el cual podría generar heterodúplex a partir de homodúplex.

Aquí hay una imagen mejor del Diccionario de términos genéticos del NCI que muestra más claramente la diferencia entre homo y heterodúplex:

Las dos hebras en un heterodúplex aún deben tener un alto grado de identidad de secuencia o no podrán formar un dúplex en primer lugar. Sin embargo, debido a que provienen de diferentes fuentes, es probable que haya muchas subsecuencias cortas en las que uno o más pares de bases no coinciden, lo que provoca una deformación como se muestra.


¿Qué es heterodúplex? - biología

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Endonucleasas de restricción y metilasas de modificación

(a) Tolerancia al desajuste de una sola base.

Los sitios de reconocimiento de heterodúplex que contienen un desajuste de tipo Pu: Py (o Py: Pu) se escinden, en condiciones óptimas, a velocidades moderadamente más lentas en comparación con la velocidad de escisión en la secuencia canónica (10). La presencia de bases de purina originales en los desajustes parece jugar un papel importante en la velocidad de reacción (ver EcoRI, Sección II, B). El nivel de tolerancia también depende de la posición exacta de los desajustes individuales dentro de los sitios de reconocimiento. La hebra que contiene la base que no coincide se escinde mucho más lentamente que la hebra normal, que a su vez se escinde más lentamente que su contraparte en las secuencias canónicas (11).


¿Qué es heterodúplex? - biología

A heterodúplex es una molécula bicatenaria (dúplex) de ácido nucleico originada a través de la recombinación genética de cadenas simples complementarias derivadas de diferentes fuentes, como de diferentes cromosomas homólogos o incluso de diferentes organismos. Un ejemplo de ello es el ADN heterodúplex hebra formada en procesos de hibridación, generalmente para.
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Los poxvirus son grandes ADN virus que se replican en el citoplasma de las células infectadas y se recombinan. Heterodúplex ADN la formación está asociada con la replicación.
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    estructura.El ADN es un polímero de desoxirribonucleótidos. El modelo propuesto por WATSON y CRICK en 1953 ahora se ha aceptado universalmente para el ADN de doble hebra. Se considera que el ADN está formado por dos CADENAS DE POLINUCLEÓTIDOS unidas por enlaces de hidrógeno entre BASES DE NUCLEÓTIDOS, con EMPAREJAMIENTO DE BASE COMPLEMENTARIO entre bases específicas que garantizan una estructura estable de lados paralelos: emparejamiento de ADENINA con TIMINA (enlaces 2H) y CITOSINA con GUANINA (enlaces 3H). ).

Cada una de las dos cadenas de polinucleótidos tiene una polaridad opuesta debido a la forma en que los fosfatos se unen a los grupos de azúcar mediante 3 & # x0027-5 & # x0027 BONOS DE FOSFODIÉSTER. El ADN puede existir en varias configuraciones, de las cuales el B-ADN es la forma predominante. De esta forma, la molécula se tuerce en una doble hélice a la derecha, con un giro completo cada décima base.

En eucariotas, la replicación del ADN ocurre en la fase & # x2018S & # x2019 del CICLO CELULAR antes de la división nuclear.


La formación de ADN heterodúplex se asocia con la replicación y recombinación en células infectadas por poxvirus

Los poxvirus son virus de ADN de gran tamaño que se replican en el citoplasma de las células infectadas y se recombinan con altas frecuencias. Se utilizaron precipitados de fosfato de calcio para cotransfectar células infectadas con el virus del fibroma de Shope con diferentes sustratos de ADN y los productos recombinantes se ensayaron mediante métodos genéticos y bioquímicos. Hemos demostrado previamente que los ADN de bacteriófago lambda pueden usarse como sustratos en estos experimentos y los recombinantes ensayados en Escherichia coli después de la recuperación de ADN y el empaquetamiento in vitro. Usando este ensayo, se observó que el 2-3% del fago recuperado de los cruces entre mutantes puntuales retuvo el heterodúplex en al menos uno de los sitios mutantes. La confiabilidad de este análisis genético se confirmó utilizando sustratos de ADN que permitieron la detección directa de moléculas heterodúplex mediante electroforesis en gel desnaturalizante y transferencia Southern. Se señaló además que la formación de heterodúplex coincidió con el inicio tanto de la replicación como de la recombinación, lo que sugiere que los poxvirus, como ciertos bacteriófagos, no hacen una distinción bioquímica clara entre estos tres procesos. La fracción de moléculas heterodúplex alcanzó su punto máximo aproximadamente 12 horas después de la infección y luego disminuyó más tarde en la infección. Esta disminución probablemente se debió a la replicación del ADN más que a la reparación del desajuste porque, aunque persistieron altos niveles de ADN polimerasa inducida más allá del tiempo de recuperación máxima del heterodúplex, no pudimos detectar ningún tipo de actividad de reparación del desajuste en los extractos citoplasmáticos. Estos resultados sugieren que, aunque se forman moléculas heterodúplex durante el progreso de la infección poxviral, la conversión de genes a través de la reparación de errores de apareamiento probablemente no produce la mayoría de los recombinantes. La importancia de estas observaciones se discute considerando algunas de las propiedades únicas de la biología poxviral.


Contenido

Los efectores de TAL son proteínas secretadas por Xanthomonas bacterias a través de su sistema de secreción de tipo III cuando infectan plantas. [2] El dominio de unión al ADN contiene una secuencia repetida de 33-34 aminoácidos altamente conservada con los aminoácidos 12º y 13º divergentes. Estas dos posiciones, denominadas Diresidue variable de repetición (RVD), son muy variables y muestran una fuerte correlación con el reconocimiento de nucleótidos específicos. [3] [4] Esta relación directa entre la secuencia de aminoácidos y el reconocimiento de ADN ha permitido la ingeniería de dominios de unión a ADN específicos mediante la selección de una combinación de segmentos repetidos que contienen los RVD apropiados. [1] En particular, los cambios leves en el RVD y la incorporación de secuencias de RVD "no convencionales" pueden mejorar la especificidad del objetivo. [5]

El dominio de escisión de ADN no específico del extremo de la endonucleasa FokI puede usarse para construir nucleasas híbridas que son activas en un ensayo de levadura. [6] [7] Estos reactivos también son activos en células vegetales [8] [9] y en células animales. [9] [10] [11] [12] Los estudios iniciales de TALEN utilizaron el dominio de escisión de FokI de tipo salvaje, pero algunos estudios posteriores de TALEN [11] [13] [14] también utilizaron variantes del dominio de escisión de FokI con mutaciones diseñadas para mejorar la escisión especificidad [15] [16] y actividad de escisión. [17] El dominio FokI funciona como un dímero, requiriendo dos construcciones con dominios de unión de ADN únicos para sitios en el genoma diana con la orientación y el espaciado adecuados. Tanto el número de residuos de aminoácidos entre el dominio de unión al ADN de TALE y el dominio de escisión de FokI como el número de bases entre los dos sitios de unión de TALEN individuales parecen ser parámetros importantes para lograr altos niveles de actividad. [10] [18]

La simple relación entre la secuencia de aminoácidos y el reconocimiento de ADN del dominio de unión TALE permite la ingeniería eficiente de proteínas. En este caso, la síntesis de genes artificiales es problemática debido al apareamiento inadecuado de la secuencia repetitiva que se encuentra en el dominio de unión de TALE. [19] Una solución a esto es utilizar un programa de software disponible públicamente (DNAWorks [20]) para calcular oligonucleótidos adecuados para ensamblar en un ensamblaje de oligonucleótidos de PCR de dos pasos seguido de amplificación de genes completos. También se han informado varios esquemas de ensamblaje modular para generar construcciones TALE diseñadas. [9] [19] [21] [22] [23] [24] Ambos métodos ofrecen un enfoque sistemático para diseñar dominios de unión al ADN que es conceptualmente similar al método de ensamblaje modular para generar dominios de reconocimiento de ADN con dedos de zinc.

Una vez que se han ensamblado las construcciones de TALEN, se insertan en plásmidos, las células diana se transfectan con los plásmidos y los productos génicos se expresan y entran en el núcleo para acceder al genoma. Alternativamente, las construcciones de TALEN se pueden administrar a las células como ARNm, lo que elimina la posibilidad de integración genómica de la proteína que expresa TALEN. El uso de un vector de ARNm también puede aumentar drásticamente el nivel de reparación dirigida por homología (HDR) y el éxito de la introgresión durante la edición de genes.

Mecanismos Editar

TALEN se puede utilizar para editar genomas induciendo roturas de doble cadena (DSB), a las que las células responden con mecanismos de reparación.

La unión de extremos no homólogos (NHEJ) liga directamente el ADN de cualquier lado de una rotura de doble hebra donde hay muy poca o ninguna superposición de secuencia para el apareamiento. Este mecanismo de reparación induce errores en el genoma a través de indeles (inserción o deleción), o el reordenamiento cromosómico, cualquiera de estos errores puede hacer que los productos génicos codificados en esa ubicación no sean funcionales. [10] Debido a que esta actividad puede variar según la especie, el tipo de célula, el gen diana y la nucleasa utilizada, se debe monitorear al diseñar nuevos sistemas. Se puede realizar un ensayo de escisión de heterodúplex simple que detecta cualquier diferencia entre dos alelos amplificados por PCR. Los productos de escisión se pueden visualizar en geles de agarosa simples o sistemas de gel en placa.

Alternativamente, el ADN se puede introducir en un genoma a través de NHEJ en presencia de fragmentos de ADN de doble hebra exógenos. [10]

La reparación dirigida por homología también puede introducir ADN extraño en el DSB, ya que las secuencias de doble hebra transfectadas se utilizan como plantillas para las enzimas de reparación. [10]

Aplicaciones Editar

TALEN se ha utilizado para modificar eficazmente los genomas de las plantas, [25] creando cultivos alimentarios de importancia económica con cualidades nutricionales favorables. [26] También se han aprovechado para desarrollar herramientas para la producción de biocombustibles. [27] Además, se ha utilizado para diseñar clones de células madre embrionarias humanas modificadas de forma estable y células madre pluripotentes inducidas (IPSC) y líneas celulares eritroides humanas, [11] [28] para generar knockout C. elegans, [12] ratas knockout, [13] ratones knockout, [29] y pez cebra knockout. [14] [30] Además, el método se puede utilizar para generar organismos knockin. Wu et al. Obtuvieron un ganado sp110 knockin usando talen ninasas para inducir una mayor resistencia a la tuberculosis. [31] Este enfoque también se ha utilizado para generar ratas knockin mediante microinyección de ARNm de TALEN en embriones unicelulares. [32]

TALEN también se ha utilizado experimentalmente para corregir los errores genéticos que subyacen a la enfermedad. [33] Por ejemplo, se ha utilizado in vitro para corregir los defectos genéticos que causan trastornos como la anemia de células falciformes, [28] [34] xeroderma pigmentoso, [35] y epidermólisis ampollosa. [36] Recientemente, se demostró que TALEN se puede utilizar como herramientas para aprovechar el sistema inmunológico para combatir cánceres La focalización mediada por TALEN puede generar células T que son resistentes a los fármacos quimioterapéuticos y muestran actividad antitumoral. [37] [38]

En teoría, la especificidad de todo el genoma de las fusiones de TALEN diseñadas permite la corrección de errores en los loci genéticos individuales mediante la reparación dirigida por homología a partir de una plantilla exógena correcta. [33] En realidad, sin embargo, el en el lugar La aplicación de TALEN está actualmente limitada por la falta de un mecanismo de administración eficiente, factores inmunogénicos desconocidos y la incertidumbre en la especificidad de la unión de TALEN. [33]

Otra aplicación emergente de TALEN es su capacidad para combinarse con otras herramientas de ingeniería del genoma, como las meganucleasas. La región de unión al ADN de un efector TAL se puede combinar con el dominio de escisión de una meganucleasa para crear una arquitectura híbrida que combine la facilidad de ingeniería y la actividad de unión al ADN altamente específica de un efector TAL con la baja frecuencia y especificidad del sitio de una meganucleasa. [39]

En comparación con otras técnicas de edición del genoma, TALEN se ubica en el medio en términos de dificultad y costo. A diferencia de las ZFN, TALEN reconoce nucleótidos individuales. Es mucho más sencillo diseñar interacciones entre los dominios de unión al ADN de TALEN y sus nucleótidos diana que crear interacciones con ZNF y sus tripletes de nucleótidos diana. [40] Por otro lado, CRISPR se basa en la formación de complejos de ribonucleótidos en lugar del reconocimiento de proteínas / ADN. Los ARNg pueden dirigirse a casi cualquier secuencia del genoma y pueden producirse de forma económica, lo que hace que CRISPR sea más eficiente y menos costoso que TALEN y ZFN. TALEN es, en última instancia, 200 veces más caro que CRISPR y tarda varios meses más en realizarse.

La actividad fuera del objetivo de una nucleasa activa puede conducir a roturas indeseadas de la doble cadena y, en consecuencia, puede producir reordenamientos cromosómicos y / o muerte celular. Se han realizado estudios para comparar la toxicidad relativa asociada a las nucleasas de las tecnologías disponibles. Sobre la base de estos estudios [18] y la distancia teórica máxima entre la unión al ADN y la actividad nucleasa, se cree que las construcciones de TALEN tienen la mayor precisión de las tecnologías actualmente disponibles. [41]


Una estrategia para la caracterización del ADN heterodúplex persistente en plantas superiores

El ADN heterodúplex (ADNh) generado durante la recombinación homóloga (HR) es un componente importante que da forma a la diversidad genética en los organismos que se reproducen sexualmente. Sin embargo, los estudios de este proceso en plantas superiores son limitados. Esto se debe a que los ADNh son difíciles de capturar en plantas superiores, ya que su modelo de desarrollo reproductivo solo produce gametos normales y no conserva los productos mitóticos del proceso de segregación posmeiótica (PMS), que es crucial para el estudio de los ADNh. En este estudio, utilizando el sistema modelo para la biología de plantas perennes arbóreas y leñosas (Populus), proponemos una estrategia para caracterizar los ADNh en plantas superiores. Capturamos hDNA mediante la construcción de híbridos triploides que se originan a partir de un cruce entre huevos 2n no reducidos (que contienen información de hDNA como resultado de la inhibición de la segregación cromosómica en la etapa PMS) con gametos masculinos normales. Estos híbridos triploides nos permitieron detectar la frecuencia y ubicación de los ADNh persistentes resultantes de la HR a nivel molecular. Encontramos que la frecuencia de ADNh persistente, que osciló entre el 5,3 y el 76,6%, estaba relacionada con las ubicaciones de los marcadores de repetición de secuencia simple en los cromosomas, como la distancia locus-centrómero, la secuencia de ADN circundante y la información epigenética, y la riqueza de transcripciones que codifican proteínas en estos loci. En resumen, este estudio proporciona un método para caracterizar los ADNh persistentes en plantas superiores. Cuando se pueden incorporar técnicas de secuenciación de alto rendimiento, los ensayos de ADNh persistente en todo el genoma para plantas superiores pueden llevarse a cabo fácilmente utilizando la estrategia presentada en este estudio.

Palabras clave: Populus pseudo-simonii × Populus nigra ‘Zheyin3 #’ Populus × beijingensis heteroduplex DNA post-segregación meiótica triploide.


8.7: Modelo de rotura de doble hebra para recombinación

  • Contribuido por Ross Hardison
  • T. Ming Chu Profesor (Bioquímica y Biología Molecular) en la Universidad Estatal de Pensilvania

Varias líneas de evidencia, principalmente de estudios de recombinación en levaduras, requirieron cambios en el intercambio recíproco de cadenas de ADN iniciadas en las mellas de una sola hebra. Como se acaba de mencionar, un dúplex de ADN tendía a ser el donante de información y el otro el receptor, en contraste con el intercambio equitativo predicho por el modelo de Holliday original. Además, en la levadura, la recombinación podría iniciarse mediante roturas de doble hebra. Por ejemplo, ambas cadenas de ADN se escinden (por la endonucleasa HO) para iniciar la recombinación entre las ESTERAy HML(R) loci en el cambio de tipo de apareamiento en levadura. Usando plásmidos transformados en levadura, se demostró que un espacio de doble hebra en el dúplex & ldquoaggressor & rdquo podría usarse para iniciar la recombinación, y el espacio se reparó durante la recombinación (este experimento se explora en el problema 8 .___). En este caso, el espacio en un dúplex se llenó con ADN donado del otro sustrato. Toda esta evidencia se incorporó a un nuevo modelo importante para la recombinación de Jack Szostak y sus colegas en 1983. Se llama modelo de rotura de doble hebra. Las nuevas características de este modelo (en contraste con el modelo de Holliday) son la iniciación en las roturas de la doble hebra, la digestión por nucleasas del dúplex agresor, la nueva síntesis y la reparación de la brecha. Sin embargo, el cruce fundamental de Holliday, la migración de rama y la resolución se conservan, aunque con una complejidad algo mayor debido al número adicional de cruces de Holliday. Aunque muchos aspectos del mecanismo de recombinación difieren

Los pasos en el modelo de ruptura de doble hebra hasta la formación de las moléculas conjuntas se esquematizan en la Figura 8.9.

  1. Una endonucleasa escinde ambas cadenas de uno de los dúplex de ADN homólogos, que se muestran como líneas azules delgadas en la Figura 8.9. Este es el agresor duplex, ya que inicia la recombinación. También es el recipientede información genética, como será evidente a medida que avanzamos en el modelo.
  2. El corte se agranda mediante una exonucleasa para generar un espacio con los extremos 3 'de una sola hebra en las hebras.
  3. Uno de los extremos libres 3 'invade una región homóloga en el otro dúplex (mostrado como líneas rojas gruesas), llamado donante dúplex. La formación de heterodúplex también genera una Bucle en D(un bucle de desplazamiento), en el que se desplaza una hebra del dúplex donante.
  4. El bucle D se amplía como resultado de reparación de síntesis cebado por el invasor extremo 3 '. El bucle D eventualmente se vuelve lo suficientemente grande como para cubrir todo el espacio en el dúplex agresor, es decir, el inicialmente escindido por la endonucleasa. El ADN recién sintetizado utiliza el ADN del dúplex de ADN invadido (línea roja gruesa) como plantilla, por lo que el ADN nuevo tiene la secuencia especificada por el ADN invadido.
  5. Cuando la hebra desplazada del donante (rojo) se extiende hasta el otro lado del espacio en el receptor (azul fino), se templará con el otro extremo de una sola hebra de 3 'en ese extremo del espacio. La hebra desplazada ahora ha llenado el espacio en el dúplex agresor, donando su secuencia al dúplex que inicialmente se escindió. Repararsíntesiscatalizada por la ADN polimerasa convierte el bucle D del donante en ADN dúplex. Durante los pasos 4 y 5, el dúplex que fue invadido inicialmente sirve como donantedúplex, es decir, proporciona información genética durante esta fase de síntesis de reparación. Por el contrario, el dúplex agresor es el receptor de información genética. Tenga en cuenta que los modelos de invasión de una sola hebra predicen lo contrario, donde la hebra invasora inicial es el donante de la información genética.
  6. La ADN ligasa sellará las muescas, una en el lado izquierdo del diagrama de la Figura 8.9 y la otra en el lado derecho. Aunque este último se encuentra entre una hebra en el dúplex inferior y una hebra en el dúplex superior, es equivalente a la ligadura en la primera muesca (la aparente separación física es un artefacto del dibujo). En ambos casos, sellar la muesca forma una unión Holliday.

Figura 8.9. Pasos en el modelo de ruptura de doble cadena para la recombinación, desde el inicio hasta la formación de las uniones recombinantes.

En este punto, el intermedio de recombinación ha dos uniones recombinantes (Cruces de Holliday). La brecha original en el dúplex agresor se ha llenado con ADN donado por el dúplex invadido. La brecha llena es ahora flanqueado por heterodúplex. Los heterodúplex están dispuestos asimétricamente, con uno a la izquierda del espacio lleno en el dúplex agresor y uno a la derecha del espacio lleno en el dúplex donante. La migración de ramas puede extender las regiones de heterodúplex desde cada unión de Holliday.

El intermedio de recombinación ahora puede resolverse. La presencia de dos uniones de recombinación agrega cierta complejidad, pero el proceso es esencialmente el mismo que se discutió para el modelo de Holliday. Cada articulación se puede resolver de forma horizontal o vertical. El factor clave es si las uniones se resuelven en el mismo modo o sentido (tanto horizontal como verticalmente) o en modos diferentes.

Si ambas articulaciones se resuelven en el mismo sentido (Figura 8.10), se liberarán los dúplex originales, cada uno con una región de información genética alterada que es una "huella" del evento de intercambio. Esa región de información alterada es la brecha original, más o menos las regiones cubiertas por la migración de ramas. Por ejemplo, si ambas uniones se resuelven cortando las hebras originalmente cortadas (& quothorizontally & quot en nuestro diagrama del modelo de Holliday), entonces no hay cruce en ninguna de las uniones. Si ambas uniones se resuelven cortando las hebras que no se cortaron originalmente ("verticalmente" en nuestro diagrama del modelo Holliday), entonces tiene un cruce en ambas uniones. Este doble entrecruzamiento estrechamente espaciado no producirá recombinación de marcadores flanqueantes.

Figura 8.10. Resolución de intermedios en el modelo de rotura de doble hebra cortando las uniones recombinantes en el mismo modo o sentido. El cuadro describe la región entre las dos uniones resueltas.

Por el contrario, si cada articulación se resuelve en direcciones opuestas (Figura 8.11), habrá recombinación entre los marcadores flanqueantes. Es decir, una articulación no dará un cruce y la otra sí.

Figura 8.11.Resolución de intermedios en el modelo de rotura de doble hebra cortando las uniones recombinantes en el modo o sentido opuesto.

Varias características distinguen el modelo de rotura de doble hebra del modelo de muesca de hebra única propuesto inicialmente por Holliday. En el modelo de rotura de doble hebra, la región correspondiente al espacio original ahora tiene la secuencia del dúplex donante en ambas moléculas. Esto está flanqueado por heterodúplex en cada extremo, uno en cada dúplex. Por lo tanto, la disposición de heterodúplex es asimétrico es decir, hay un heterodúplex diferente en cada molécula dúplex. Parte de una molécula dúplex se ha convertido en la secuencia de la otra (el receptor, que inicia el dúplex, se ha convertido en la secuencia del donante). En el modelo de invasión de una sola hebra, cada dúplex de ADN tiene material heterodúplex que cubre la región desde el sitio inicial de intercambio hasta la rama migratoria, es decir, los heterodúplex son simétricos. En variaciones del modelo (Meselson-Radding) en el que parte del ADN se degrada y se vuelve a sintetizar, el cromosoma iniciador es el donante de la información genética.

Estos modelos también tienen muchas características importantes en común. Los pasos que son comunes a todos los modelos incluyen la generación de una sola hebra de ADN en un extremo, una búsqueda de homología, invasión de hebras o intercambio de hebras para formar una molécula conjunta, migración de ramas y resolución. Se han aislado y caracterizado las enzimas que catalizan cada uno de estos pasos. Este es el tema del resto de este capítulo.


1. Fogel, S., Mortimer, R. K., Lusnak, K. y Tavares, V. Cold Spring Harb. Symp. cuant. Biol 43, 1325-1341 (1979). 2. Fogel, S., Mortimer, R. K. y Lusnak, K. en La biología molecular de la levadura Saccharomyces vol. 1 (eds Strathern, J. N., Jones, E. W. y Broach, J. R.) 289–339 (Cold Spring Harbor Laboratory, Nueva York, 1982). 3. Fogel, S., Mortimer, R. K. & amp Lusnak, K. en Molecular and Experimental Perspectives (eds Spender, J. F. T., Spencer, D. M. & amp Smith, A. R. W.) 65-107 (Springer, Nueva York, 1983). 4. Radding, C. M. A Rev. Biochem. 47, 847–880 (1978). 5. Golin, J. E. y Esposito, M. S. Molec. gen. Gineta. 183, 252-263 (1981). 6. Meselson, M. S. y Radding, C. M. Proc. natn. Acad. Sci. U.S.A. 72, 358–361 (1975). 7. Szostak, J. W., Orr-Weaver, T. L., Rothstein, R. J. y Stahl, F. W. Cell 33, 25-35 (1983). 8. Williamson, M. S., Game, J. C. y Fogel, S. Genetics 110, 609-646 (1985). 9. Bishop, D. B. y Kolodner, R. D. Molec. celda. Biol. 6, 3401-3409 (1986). 10. Wagner, R. y Meselson, M. Proc. natn. Acad. Sci. U.S.A. 73, 4135–4139 (1976). 11. Stinchcomb, D. T., Mann, C. y Davis, R. W. J. molec. Biol. 158, 157-179 (1982). 12. Fishel, R. A. y Kolodner, R. /. molec. Biol. 188, 147-157 (1986). 13. Fleiss, J. L. Métodos estadísticos para tasas y proporciones (Wiley, Nueva York, 1981).

Afiliaciones

Laboratorio de Genética Molecular, Dana Farber Cancer Institute, Boston, Massachusetts, 02115, EE. UU.

Douglas K. Bishop y Richard D. Kolodner

Departamento de Biología Celular y del Desarrollo, Universidad de Harvard, Cambridge, Massachusetts, 02138, EE. UU.

Departamento de Genética, Universidad de California, Berkeley, California, 94720, EE. UU.

Marsha S. Williamson y amp Seymour Fogel

Departamento de Química Biológica, Facultad de Medicina de Harvard, Boston, Massachusetts, 02115, EE. UU.

Notas del autor

A quién debe dirigirse la correspondencia.

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Heteroátomo (heteroátomo): un átomo que no es carbono ni hidrógeno en un compuesto orgánico.

Heteroauxina (hetero - auxina): término bioquímico que se refiere a un tipo de hormona del crecimiento que se encuentra en las plantas. El ácido indolacético es un ejemplo.

Heterocelular (hetero - celular): refiriéndose a una estructura que está formada por diferentes tipos de células.

Heterocromatina (heterocromatina): una masa de material genético condensado, compuesto de ADN y proteínas en los cromosomas, que tienen poca actividad genética. La heterocromatina se tiñe de manera más oscura con tintes que otra cromatina conocida como eucromatina.

Heterocromía (heterocromia): una condición que da como resultado que un organismo tenga ojos con iris de dos colores diferentes.

Heterociclo (heterociclo): un compuesto que contiene más de un tipo de átomo en un anillo.

Heteroquiste (hetero - quiste): una célula cianobacteriana que se ha diferenciado para realizar la fijación de nitrógeno.

Heterodúplex (hetero - dúplex): se refiere a una molécula de ADN de doble hebra donde las dos hebras no son complementarias.

Heterogamético (heterogamético): capaz de producir gametos que contienen uno de dos tipos de cromosomas sexuales. Por ejemplo, los machos producen espermatozoides que contienen un cromosoma sexual X o un cromosoma sexual Y.

Heterogamia (hetero - gamy): un tipo de alternancia de generaciones visto en algunos organismos que alternan entre una fase sexual y una fase partenogénica. La heterogamia también puede referirse a una planta con diferentes tipos de flores o un tipo de reproducción sexual que involucra dos tipos de gametos que difieren en tamaño.

Heterogéneo (heterogéneo): tener un origen fuera de un organismo, como en el trasplante de un órgano o tejido de un individuo a otro.

Heteroinjerto (heteroinjerto): un injerto de tejido que se obtuvo de una especie diferente del organismo que recibió el injerto.

Heterocarion (hetero - karyon): célula que contiene dos o más núcleos que son genéticamente diferentes.

Heterocinesis (hetero - kinesis): el movimiento y distribuciones diferenciales de los cromosomas sexuales durante la meiosis.

Heterólogo (hetero - logous): estructuras que son diferentes en función, tamaño o tipo. For example, X chromosomes and Y chromosomes are heterologous chromosomes.

Heterolysis (hetero - lysis): dissolution or destruction of cells from one species by the lytic agent from a different species. Heterolysis can also refer to a type of chemical reaction where the bond breaking process forms pairs of ions.

Heteromorphic (hetero - morph - ic): differing in size, form or shape, as in some homologous chromosomes. Heteromorphic also refers to having different forms at different periods in a life cycle.

Heteronomous (hetero - nomous): a biological term that refers to the parts of an organism that differ in their development or structure.

Heteronym (hetero - nym): one of two words having the same spelling but different sounds and meanings. For example, lead (a metal) and lead (to direct).

Heterophil (hetero - phil): having an attraction to or affinity for different kinds of substances.

Heterophyllous (hetero - phyllous): refers to a plant that has dissimilar leaves. Examples include some types of aquatic plant species.

Heteroplasmy (hetero - plasmy): the presence of mitochondria within a cell or organism that contains DNA from different sources.

Heteroploid (hetero - ploid): having an abnormal chromosome number differing from the normal diploid number of a species.

Heteropsia (heter - opsia): an abnormal condition in which a person has a different vision in each eye.

Heterosexual (hetero - sexual): an individual that is attracted to persons of the opposite sex.

Heterosporous (hetero - spor - ous): producing two different types of spores that develop into male and female gametophytes, as in the male microspore (pollen grain) and female megaspore (embryo sac) in flowering plants.

Heterothallic (hetero - thallic): a type of cross-fertilization reproduction that is used by some species of fungi and algae.

Heterótrofo (hetero - troph): an organism that uses a different means of obtaining nutrition than an autotroph. Heterotrophs can not obtain energy and produce nutrients directly from sunlight as do autotrophs. They must obtain energy and nutrition from the foods they eat.

Heterozygosis (hetero - zyg - osis): of or related to a heterozygote or related to the formation of a heterozygote.

Heterocigoto (hetero - zyg - ous): having two different alleles for a given trait.


Ver el vídeo: Replicación del ADN - 3D (Agosto 2022).